TIÊU CHUẨN QUỐC GIA TCVN 9298:2014 VỀ VI SINH VẬT – BẢO QUẢN DÀI HẠN VI SINH VẬT DÙNG TRONG NÔNG NGHIỆP – PHƯƠNG PHÁP ĐÔNG KHÔ
TIÊU CHUẨN QUỐC GIA
TCVN 9298:2014
VI SINH VẬT – BẢO QUẢN DÀI HẠN VI SINH VẬT DÙNG TRONG NÔNG NGHIỆP – PHƯƠNG PHÁP ĐÔNG KHÔ
Microorganisms – Long term preservation of microorganisms used in agriculture – Lyophilization method
Lời nói đầu
TCVN 9298:2014 do Viện Thổ nhưỡng Nông hóa biên soạn , Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn đề nghị , Tổng cục Tiêu chuẩn Đo lường Chất lượng thẩm định, Bộ Khoa học và Công nghệ công bố.
VI SINH VẬT – BẢO QUẢN DÀI HẠN VI SINH VẬT DÙNG TRONG NÔNG NGHIỆP – PHƯƠNG PHÁP ĐÔNG KHÔ
Microorganisms – Long term preservation of microorganisms used in agriculture – Lyophilization methoơ
1. Phạm vi áp dụng
Tiêu chuẩn này áp dụng cho việc bảo quản dài hạn vi sinh vật (vi khuẩn, xạ khuẩn, nấm men, nấm sợi) dị dưỡng hiếu khí và vi hiếu khí sử dụng trong nông nghiệp (trừ vi sinh vật dùng trong lĩnh vực thú y) dưới dạng sinh dưỡng và bào tử trong điều kiện vô trùng bằng phương pháp đông khô.
2. Thuật ngữ, định nghĩa
Trong tiêu chuẩn này sử dụng các thuật ngữ và định nghĩa sau:
2.1
Mẫu gióng (sample of culture)
Giống đã được chọn lọc, lai tạo, có tính di truyền ổn định và không bị tạp nhiễm.
2.2
Bảo quản dài hạn vi sinh vật (long term preservation of microorganisms)
Việc duy trì các chủng vi sinh vật thuần khiết, trong điều kiện phù hợp, bảo đảm mật độ tế bào vi sinh vật không nhỏ hơn 103 CFU/ml, không bị tạp nhiễm, bảo tồn hoạt tính sinh học ban đầu và thời gian bảo quản không nhỏ hơn 10 năm.
2.3
Tỷ lệ sóng của vi sinh vật (survival rate of microorganisms)
Phần trăm giữa lượng tế bào hoặc bào tử tại thời điểm kiểm tra mẫu bảo quản và lượng tế bào hoặc bào tử ngay trước khi bảo quản.
2.4.
Vi sinh vật tạp (contaminating microorganisms)
Vi sinh vật không đồng nhất về hình thái tế bào và khuẩn lạc so với giống vi sinh vật ban đầu.
2.5
Hoạt tính sinh học của vi sinh vật (bioactivity of microorganisms)
Khả năng của vi sinh vật thông qua hoạt động sống của chúng có tác dụng đến quá trình sinh trưởng, phát triển của cây trồng, vật nuôi, kiểm soát sinh học và sinh thái môi trường.
2.6
Môi trường nuôi cấy (cultural medium)
Môi trường thích hợp cho sự phát triển của một loài hay một nhóm vi sinh vật nào đó.
3. Môi trường nuôi cấy và thuốc thử
3.1. Môi trường nuôi cấy
3.1.1.Thành phần
Có thể sử dụng môi trường có bán sẵn trên thị trường hoặc môi trường dưới đây:
3.1.1.1 Môi trường để nuôi cấy vi khuẩn
– Môi trường YM (Yeast Mannitol)
Xem A.1 của Phụ lục A.
– Môi trường Ashby
Xem A.2 của Phụ lục A.
– Môi trường DAC
Xem A.3 của Phụ lục A.
– Môi trường Pikovskaya
Xem A.4 của Phụ lục A.
– Môi trường King B
Xem A.5 của Phụ lục A.
– Môi trường SP (Sucrose Peptone)
Xem A.6 của Phụ lục A.
– Môi trường Thịt – Pepton
Xem A.7 của Phụ lục A.
3.1.1.2 Môi trường để nuôi cấy xạ khuẩn
– Môi trường Gauze
Xem A.8 của Phụ lục A.
– Môi trường ISP – 4 (Inorganic Salts starch – 4)
Xem A.9 của Phụ lục A.
3.1.1.3. Môi trường để nuôi cấy nấm men
– Môi trường Hansen
Xem A.10 của Phụ lục A.
3.1.1.4 Môi trường để nuôi cấy nấm sợi
– Môi trường Czapeck
Xem A.11 của Phụ lục A.
– Môi trường Czapeck – Dox
Xem A.12 của Phụ lục A.
– Môi trường PD (Potato Dextrose)
Xem A.13 của Phụ lục A.
3.1.2. Cách chuẩn bị
Cân và hòa tan các thành phần môi trường trong nước cất theo thứ tự đã cho.
3.1.2.1 Môi trường thạch nghiêng
Phân phối từ 4 ml đến 6 ml môi trường (3.1.1) vào các ống nghiệm (4.2.3), đậy nút, khử trùng 30 min ở 121 °C trong nồi hấp áp lực (4.1.3), làm nguội đến 50 °C, đặt ống nghiệm nghiêng khoảng 45°, để yên cho đông đặc, đợi bề mặt thạch khô tiến hành cấy giống.
3.1.2.2 Môi trường dịch thể
Phân phối môi trường (3.1.1) vào bình tam giác (4.2.2), đậy nút bông, khử trùng 30 min ở 121 °C trong nồi hấp áp lực (4.1.3).
3.1.2.3. Môi trường thạch đĩa
Phân phối môi trường (3.1.1) vào bình tam giác (4.2.2), đậy nút bông, khử trùng 30 min ở 121 °C trong nồi hấp áp lực (4.1.3), làm nguội đến 50 °C, phân phối các lượng từ 15 ml đến 20 ml môi trường vào các đĩa Petri (4.2.4) đã chuẩn bị sẵn (4.3); tiến hành trong tủ cấy vô trùng (4.1.2).
3.2. Môi trường bảo vệ
3.2.1. Thành phần
Sữa gầy (Skim milk) 20,0 g
Meso – inositol (C6H12O6) 5,0 g
Nước cất vừa đủ 100 ml
3.2.2. Cách chuẩn bị
Cân và hòa tan các thành phần môi trường bảo vệ trong nước cất theo thứ tự đã cho (3.2.1). Sau đó cho vào bình tam giác (4.2.2), khử trùng ở 115 °C không quá 15 min trong nồi hấp áp lực (4.1.3).
3.3. Dung dịch pha loãng
Dung dịch pha loãng là nước muối sinh lý (NaCI 0,85 %), pH = 7, không chứa các hợp chất nitơ;
Lấy 9 ml dịch pha loãng cho vào các ống nghiệm (4.2.3) hoặc 90 ml dịch pha loãng cho vào các bình tam giác (4.2.2), đậy nút bông và khử trùng ở 121 °C không ít hơn 20 min trong nồi hấp áp lực (4.1.3).
4. Thiết bị, dụng cụ
Sử dụng các thiết bị, dụng cụ thông thường trong phòng thí nghiệm và cụ thể như sau:
4.1. Thiết bị
4.1.1 Máy đông khô, nhiệt độ đông lạnh -50 °C, yêu cầu bơm chân không 144 L/min, cỏ hệ thống hàn ống tự động
4.1.2 Tủ cấy vô trùng, vận tốc dòng khí trung bình 0,79 m/s, lưu lượng khí 1204 m3/h, màng lọc ULPA với kích thước lỗ từ 0,1 mm đến 0,3 mm.
4.1.3. Nồi hấp áp lực, áp suất tối thiểu 101,3 kPa, nhiệt độ 121 °C.
4.1.4 Tủ sấy, nhiệt độ từ 40 °C đến 260 °C.
4.1.5. Tủ ấm, nhiệt độ từ 20 °C đến 60 °C.
4.1.6 Cân kỹ thuật, có độ chính xác đến 0,01 g.
4.1.7 Máy đo pH, có dải đo pH từ 0 đến 14.
4.1.8 Máy trộn (Voltex), tốc độ 1000 r/min.
4.2. Dụng cụ
4.2.1. Ống đông khô (ampul), bằng thủy tinh trung tính.
4.2.2. Bình tam giác, dung tích 250 ml.
4.2.3. Ống nghiệm, 18 mm X 180 mm.
4.2.4. Đĩa Petri, đường kính 90 mm.
4.2.5. Que cấy.
4.2.6. Que gạt mẫu (bàn trang).
4.2.7. Pipet (Micropipet), có thể lấy các thể tích 0,1 ml và 1 ml.
4.2.8. Đèn đo chân không, có đèn UV.
4.3. Chuẩn bị dụng cụ
Dụng cụ sử dụng trong nuôi cấy, bảo quản vi sinh vật phải được rửa sạch, tiệt trùng bằng một trong các phương pháp dưới đây:
+ Khử trùng khô: Giữ ở nhiệt độ 180 °C không ít hơn 1 h trong tủ sấy (4.1.4) hoặc;
+ Khử trùng ướt: Giữ ở nhiệt độ 121 °C không ít hơn 30 min trong nồi hấp áp lực (4.1.3).
Rửa sạch ống đông khô (ampul) (4.2.1); sau đó ngâm trong dung dịch HCI 2 % trong 12 h, rửa lại bằng nước máy từ 3 lần đến 4 lần, tráng lại bằng nước cất, làm khô và chuẩn bị nút bông, khử trùng bằng cách giữ ở nhiệt độ 121 °C không ít hơn 30 min trong nồi hấp áp lực (4.1.3).
5. Cách tiến hành
5.1. Tạo sinh khối vi sinh vật
Mẫu giống (2.1) được nuôi cấy trên môi trường thạch nghiêng đã chuẩn bị sẵn (3.1.2.1), ở nhiệt độ và thời gian thích hợp (từ 28 °C đến 30 °C không ít hơn 2 ngày đối với vi khuẩn, nấm men, từ 28 °C đến 30 °C không ít hơn 3 ngày đối với nấm sợi và từ 35 °C đến 37 °C không ít hơn 5 ngày đối với xạ khuẩn) để vi sinh vật phát triển đồng đều trên vết cấy, thu sinh khối vi sinh vật để tiến hành bảo quản; tiến hành trong tủ cấy vô trùng (4.1.2).
5.2. Tạo dịch huyền phủ vi sinh vật
Dịch huyền phủ vi sinh vật được chuẩn bị bằng cách cho 2 ml dịch môi trường bảo vệ đã chuẩn bị sẵn (3.2.2) vào ống thạch nghiêng đã nuôi cấy vi sinh vật (5.1), sau đó dùng pipet Pasteur khuấy nhẹ tạo dịch huyền phù đồng nhất, đảm bảo mật độ tế bào vi sinh vật không nhỏ hơn 108 tế bào/ml.
Dùng pipet vô trùng lấy 1 ml dịch huyền phù vi sinh vật nhỏ vào đáy ống đông khô (ampul), không để dính vi sinh vật lên mép hoặc thành ống đông khô (ampul).
Tiến hành trong tủ cấy vô trùng (4.1.2).
5.3. Quá trình đông khô
Ống đông khô (5.2) được giữ ở nhiệt độ từ -40 °C đến -80 °C trong thời gian không ít hơn 6 h;
Ống đông khô được lắp vào hệ thống đông khô và quá trình làm mất nước trong điều kiện lạnh được tiến hành trong thời gian từ 3 h đến 4 h;
Tạo chỗ thắt trên ống đông khô, khoảng cách chỗ thắt từ 1,0 cm đến 1,5 cm;
Ống đông khô sau khi được làm thắt tiếp tục được làm khô trong thời gian 3 h và áp suất không lớn hơn 6.10–1 mBar,
Hàn kín ống đông khô được thực hiện trực tiếp trên máy đông khô.
5.4. Chất lượng của mẫu sau đông khô
– Ống đông khô có độ chân không tuyệt đối;
– Tỷ lệ sống của mẫu giống sau đông khô không ít hơn 106 CFU/ml;
– Không chứa vi sinh vật tạp;
– Hoạt tính sinh học của mẫu giống không thay đổi so với trước bảo quản.
5.5. Bảo quản
Mẫu được bảo quản ở 4 °C hoặc ở nhiệt độ phòng. Thời gian bảo quản không ít hơn 10 năm.
5.6. Kiểm tra mẫu
5.6.1. Độ chân không của mẫu
Sử dụng đèn phát hiện mức độ chân không: Đổi với các mẫu đạt độ chân không cần thiết thì xuất hiện màu xanh tím nhạt, đối với các mẫu không đạt tiêu chuẩn thì không có tín hiệu hoặc màu tím đậm.
5.6.2. Tỷ lệ sống của vi sinh vật
5.6.2.1. Chuẩn bị dung dịch huyền phù vi sinh vật
Lấy mẫu bảo quản cần kiểm tra ra khỏi nhiệt độ bảo quản. Khi nhiệt độ của mẫu bảo quản bằng nhiệt độ phòng thí nghiệm, tiến hành kiểm tra mẫu.
Vô trùng bên ngoài ampul bằng gạc tẩm cồn.
Mở ống đông khô bằng cách đốt nóng đầu hàn trên đèn cồn và làm lạnh đột ngột bằng cồn đốt.
Dùng pipet vô trùng thêm 1 ml môi trường nuôi cấy dịch thể (3.1.2.2) vào ống đông khô để hydrat hóa mẫu giống. Lắc kỹ trong 5 min để đảm bảo các tế bào được phân bổ đều. Dung dịch được tạo ra gọi là dịch huyền phù ban đầu.
Dùng pipet vô trùng lấy toàn bộ dịch huyền phù ban đầu (1 ml) cho vào 9 ml dung dịch pha loãng đã chuẩn bị sẵn (3.3), tránh chạm đầu pipet vào dung dịch pha loãng. Trộn kỹ bằng máy trộn Vortex (4.1.8) để dung dịch pha loãng mẫu có nồng độ pha loãng là 10-2. Tiếp tục pha loãng để đạt được độ pha loãng 10–4,10–5, 10-6.
Tiến hành trong tủ cấy vô trùng (4.1.2).
5.6.2.2. Cấy mẫu
Dùng pipet vô trùng lấy một lượng (thường là 0,1 ml) dung dịch huyền phù vi sinh vật cấy vào đĩa Petri chứa môi trường đã chuẩn bị sẵn (3.1.2.3). Mỗi nồng độ pha loãng được cấy lặp lại không ít hơn 2 đĩa Petri. Dùng que gạt vô trùng gạt đều cho đến khi dung dịch huyền phù vi sinh vật thấm đều trên bề mặt thạch. Tiến hành trong tủ cấy vô trùng (4.1.2).
Đợi khô bề mặt thạch, úp ngược đĩa Petri, nuôi trong tủ ấm ở nhiệt độ và thời gian thích hợp (từ 28 °C đến 30 °C không ít hơn 2 ngày đối với vi khuẩn, nấm men, từ 28 °C đến 30 °C không ít hơn 3 ngày đối với nấm sợi và từ 35 °C đến 37 °C không ít hơn 5 ngày đối với xạ khuẩn).
5.6.2.3. Tính kết quả
Đếm số lượng khuẩn lạc đặc trưng trên mỗi đĩa Petri.
Số lượng vi sinh vật trong mẫu thử được tính theo công thức (1):
N = 
x 100 (1)
trong đó:
N là số lượng vi sinh vật trong mẫu thử, tính bằng đơn vị hình thành khuẩn lạc trên mililit (CFU/ml);
SC là tổng số khuẩn lạc đặc trưng đếm được trên tất cả các đĩa Petri được giữ lại;
V là thể tích dịch cấy trên mỗi đĩa Petri, tính bằng mililit (ml);
n1 là số đĩa Petri được giữ lại ở độ pha loãng thứ nhất;
n2 là số đĩa Petri được giữ lại ở độ pha loãng thứ hai;
d là hệ số pha loãng tương ứng với độ pha loãng thứ nhất.
CHÚ THÍCH:
1) Đếm ở các đĩa Petri có chứa không quá 300 khuẩn lạc ở hai độ pha loãng kế tiếp nhau và điều cơ bản là một trong các đĩa này có chứa ít nhất 15 khuẩn lạc;
2) Làm tròn kết quả đến hai chữ số có nghĩa;
3) Biểu thị kết quả bằng số từ 1,0 đến 9,9 nhân với 10x, trong đó X là lũy thừa tương ứng của 10.
Tỷ lệ sống của mẫu giống được tính theo công thức (2):
R = 
x 100 (2)
trong đó:
R là tỷ lệ sống của mẫu giống, tính bằng phần trăm (%);
N1 là số lượng vi sinh vật trong thử sau bảo quản, tính bằng đơn vị hình thành khuẩn lạc trên mililit (CFU/ml);
No là số lượng vi sinh vật trong mẫu thử trước bảo quản, tính bằng đơn vị hình thành khuẩn lạc trên mililit (CFU/ml).
5.6.3 Kiểm tra vi sinh vật tạp
5.6.3.1. Chuẩn bị dung dịch huyền phù vi sinh vật
Xem 5.6.2.1
5.6.3.2. Cấy mẫu
Xem 5.6.2.2
5.6.3.3. Đọc kết quả
Quan sát các khuẩn lạc vi sinh vật mọc trên đĩa Petri (5.6.2.2), nếu thấy các khuẩn lạc không đặc trưng của mẫu giống chứng tỏ mẫu thử chứa vi sinh vật tạp.
5.6.4. Hoạt tính sinh học
Tiến hành theo những phương pháp cụ thể phụ thuộc vào đặc tính sinh học của từng mẫu giống.
Phụ lục A
(Qui định)
Thành phần môi trường nuôi cấy
A.1 Môi trường YM (Yeast Mannitol)
|
Mannitol (C6H8(OH)6) |
10,0 g |
| Dikali hydro phosphat (K2HPO4) | 0,5 g |
| Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) | 0,2 g |
| Natri clorua (NaCI) | 0,1 g |
| Chất chiết nấm men | 0,5 g |
| Canxi cacbonat (CaCO3) | 0,5 g |
| Dung dịch công gô đỏ (C32H22O6H6S2Na2) 1% * | 2,5 ml |
| Nước cất vừa đủ | 1000 ml |
| pH | 6,8 đến 7,0 |
CHÚ THÍCH:
1) * Dung dịch công gô đỏ 1%: Hòa tan 1 g công gô đỏ trong 100 ml nước cất
2) Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.2 Môi trường Ashby
| Mannitol (C6H8(OH)6) |
20,0g |
| Dikali hydro phosphat (K2HPO4) |
0,2 g |
| Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
0,2 g |
| Natri clorua (NaCI) |
0,2 g |
| Kali sulphat (K2SO4) |
0,1 g |
| Canxi cacbonat (CaCO3) |
5,0 g |
| Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
| pH |
6,8 đến 7,0 |
CHÚ THÍCH: Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.3 Môi trường DAC
|
Axit malic (C4H605) |
5,0 g |
|
Kali dihydro phosphat (KH2PO4) |
0,5 g |
|
Sắt sulphat ngậm bảy phân tử nước (FeSO4.7H2O) |
0,05 g |
|
Mangan sulphat (MnSO4) |
0,01 g |
|
Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
0,1 g |
|
Natri clorua (NaCI) |
0,02 g |
|
Canxi clorua (CaCI2) |
0,01 g |
|
Natri molybdat (Na2MoO4) |
0,002 g |
|
Dung dịch Bromotymol blue (C27H28Br2O5S) 5 %* |
2,0 ml |
|
Hoặc dung dịch công gô đỏ (C32H22O6H6S2Na2) 1 %** |
2,5 ml |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
6,8 đến 7,0 |
CHÚ THÍCH:
1) * Dung dịch Bromotymol blue 5%: Hòa tan 5 g Bromotymol blue vào 100 ml Etanol (C2H5OH) 20%
2) ** Dung dịch công gô đỏ 1%: Hòa tan 1 g công gô đỏ trong 100 ml nước cất
3) Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.4 Môi trường Pikovskaya
|
Glucoza (C6H12O6) |
10,0 g |
|
Canxi (III) phosphat (Ca3(PO4)2) |
5,0 g |
|
Amoni sulphat ((NH4)2SO4) |
0,5 g |
|
Kali clorua (KCI) |
0,2 g |
| Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
0,1 g |
| Mangan sulphat (MnSO4) |
0,001 g |
| Sắt sulphat ngậm bảy phân tử nước (FeSO4.7H2O) |
0,001 g |
| Chất chiết nấm men |
0,5 g |
| Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
| pH |
6,8 đến 7,0 |
CHỦ THÍCH: Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.5 Môi trường King B
|
Pepton |
20,0 g |
|
Glyxerin |
10,0 g |
|
Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
1,5g |
|
Dikali hydro phosphat (K2HPO4) |
1,5 g |
|
Sắt sulphat ngậm bảy phân tử nước (FeSO4.7H2O) |
0,001 g |
|
Chất chiết nấm men |
0,5 g |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
7,0 đến 7,2 |
CHÚ THÍCH: Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.6 Môi trường SP (Sucrose Peptone)
|
Sacaroza (C12H22O11) |
20,0 g |
|
Pepton |
5,0 g |
|
Dikali hydro phosphat (K2HPO4) |
0,5 g |
|
Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
0,25 g |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
6,8 đến 7,0 |
CHÚ THÍCH: Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.7 Môi trường Thịt – Pepton
|
Chất chiết thịt bò |
5,0 g |
|
Pepton |
10,0 g |
|
Natri clorua (NaCI) |
5,0 g |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
6,8 đến 7,0 |
CHÚ THÍCH: Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.8 Môi trường Gauze
|
Tinh bột tan (C6H10O5)n) |
20,0 g |
|
Kali nitrat (KNO3) |
1,0 g |
|
Kali dihydro phosphat (KH2PO4) |
0,5 g |
|
Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
0,5 g |
|
Natri clorua (NaCI) |
0,5 g |
|
Sắt sulphat ngậm bảy phân tử nước (FeS04.7H2O) |
0,01 g |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
7,0 đến 7,2 |
CHÚ THÍCH: Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.9 Môi trường ISP- 4 (Inorganic Salts starch – 4)
|
Tinh bột tan (C6H10O5)n) |
10,0 g |
|
Kali dihydro phosphat (KH2PO4) |
1 g |
|
Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
1 g |
|
Natri clorua (NaCI) |
1 g |
| Amoni sulphat (NH4)2SO4 | 2,0 g |
| Canxi cacbonat (CaCO3) | 1,0 g |
| Nước cất vừa đủ | 1000 ml |
| pH | 7,0 đến 7,2 |
CHÚ THÍCH: Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.10 Môi trường Hansen
|
Glucoza (C6H12O6) |
50,0 g |
|
Pepton |
10,0 g |
|
Kali dihydro phosphat (KH2PO4) |
3,0 g |
|
Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
3,0 g |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
6,8 đến 7,2 |
CHÚ THÍCH: Nểu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.11 Môi trường Czapek
|
Sacaroza (C12H22On) |
30,0 g |
|
Natri nitrat (NaNO3) |
3,0 g |
|
Kali dihydro phosphat (KH2PO4) |
1,0 g |
|
Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) |
0,5 g |
|
Sắt sulphat ngậm bảy phân tử nước (FeSO4.7H2O) |
0,01 g |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
6,0 đến 6,5 |
CHÚ THÍCH:
1) pH môi của trường được điều chỉnh bằng axit axetic 1N;
2) Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.12 Môi trường Czapek – Dox
|
Sacaroza (C12H22O11) |
30,0 g |
| Natri nitrat (NaNO3) | 2,0 g |
| Kali clorua (KCI) | 1,0 g |
| Kali dihydro phosphat (KH2PO4) | 1,0 g |
| Magie sulphat ngậm bảy phân tử nước (MgSO4.7H2O) | 0,5 g |
|
Sắt sulphat ngậm bảy phân tử nước (FeSO4.7H2O) |
0,01 g |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
6,0 đến 6,5 |
CHÚ THÍCH:
1) pH môi của trường được điều chỉnh bằng axit axetic 1N;
2) Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
A.13 Môi trường PD (Potato Dextrose)
|
Dextroza (C6H12O6) |
20,0 g |
|
Khoai tây* |
200,0 g |
|
Nước cất vừa đủ |
1000 ml |
|
pH |
6,0 đến 6,5 |
CHÚ THÍCH:
1) Khoai tây thái nhỏ, cho vào 1 lít nước và đun sôi trong 20 min; sau đó lọc lấy nước trong để sử dụng làm môi trường;
2) pH môi của trường được điều chỉnh bằng axit axetic 1N;
3) Nếu môi trường thạch nghiêng hoặc thạch đĩa thì bổ sung 20,0 g thạch.
THƯ MỤC TÀI LIỆU THAM KHẢO
[1] 10 TCN 349:99. Bảo quản dài hạn nguồn gen vi sinh vật nông nghiệp bằng phương pháp đông khô.
| TIÊU CHUẨN QUỐC GIA TCVN 9298:2014 VỀ VI SINH VẬT – BẢO QUẢN DÀI HẠN VI SINH VẬT DÙNG TRONG NÔNG NGHIỆP – PHƯƠNG PHÁP ĐÔNG KHÔ | |||
| Số, ký hiệu văn bản | TCVN9298:2014 | Ngày hiệu lực | 23/07/2014 |
| Loại văn bản | Tiêu chuẩn Việt Nam | Ngày đăng công báo | |
| Lĩnh vực |
Nông nghiệp - Nông thôn |
Ngày ban hành | 23/07/2014 |
| Cơ quan ban hành |
Bộ khoa học và công nghê |
Tình trạng | Còn hiệu lực |
Các văn bản liên kết
| Văn bản được hướng dẫn | Văn bản hướng dẫn | ||
| Văn bản được hợp nhất | Văn bản hợp nhất | ||
| Văn bản bị sửa đổi, bổ sung | Văn bản sửa đổi, bổ sung | ||
| Văn bản bị đính chính | Văn bản đính chính | ||
| Văn bản bị thay thế | Văn bản thay thế | ||
| Văn bản được dẫn chiếu | Văn bản căn cứ |
