TIÊU CHUẨN QUỐC GIA TCVN 8400-1:2010 VỀ BỆNH ĐỘNG VẬT – QUY TRÌNH CHẨN ĐOÁN – PHẦN 1: BỆNH LỞ MỒM LONG MÓNG
TCVN 8400-1:2010
BỆNH ĐỘNG VẬT – QUY TRÌNH CHẨN ĐOÁN – PHẦN 1: BỆNH LỞ MỒM LONG MÓNG
Animal disease – Diagnostic procedure – Part 1: Foot and mouth disease
Lời nói đầu
TCVN 8400-1:2010 do Cục Thú y biên soạn, Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn đề nghị, Tổng cục Tiêu chuẩn Đo lường Chất lượng thẩm định, Bộ Khoa học và Công nghệ công bố.
TCVN 8400 Bệnh động vật – Quy trình chẩn đoán gồm có các phần sau:
– TCVN 8400-1:2010 Bệnh động vật – Quy trình chẩn đoán – Phần 1: Bệnh lở mồm long móng;
– TCVN 8400-2:2010 Bệnh động vật – Quy trình chẩn đoán – Phần 2: Bệnh do vi khuẩn Streptococcus suis gây ra trên lợn;
– TCVN 8400-3:2010 Bệnh động vật – Quy trình chẩn đoán – Phần 3: Bệnh giun xoắn;
– TCVN 8400-4:2010 Bệnh động vật – Quy trình chẩn đoán – Phần 4: Bệnh Niu cát xơn.
BỆNH ĐỘNG VẬT – QUY TRÌNH CHẨN ĐOÁN – PHẦN 1: BỆNH LỞ MỒM LONG MÓNG
Animal disease – Diagnostic procedure – Part 1: Foot and mouth disease
CẢNH BÁO – Việc áp dụng tiêu chuẩn này có thể liên quan đến các vật liệu, thiết bị và các thao tác gây nguy hiểm. Tiêu chuẩn này không thể đưa ra được hết tất cả các vấn đề an toàn liên quan đến việc sử dụng chúng. Người sử dụng tiêu chuẩn này phải tự thiết lập các thao tác an toàn sức khỏe thích hợp và xác định khả năng áp dụng các giới hạn quy định trước khi sử dụng tiêu chuẩn.
1. Phạm vi áp dụng
Tiêu chuẩn này quy định quy trình chẩn đoán bệnh lở mồm long móng đối với động vật móng guốc chẵn.
2. Thuật ngữ và định nghĩa
Trong tiêu chuẩn này sử dụng thuật ngữ và định nghĩa sau:
Bệnh lở mồm long móng (foot and mouth disease)
Bệnh truyền nhiễm nguy hiểm của động vật móng guốc chẵn như trâu, bò, lợn, dê, cừu và một số động vật hoang dã khác như hươu, nai. Bệnh do apthovirus thuộc họ Picornaviridae gây nên. Có 7 typ huyết thanh (serotyp) gồm: A, O, C, SAT1, SAT2, SAT3 và Asia 1. Mỗi serotyp lại có nhiều subtyp căn cứ vào sự khác biệt về gen và cấu trúc kháng nguyên. Virus gây bệnh có triệu chứng lâm sàng giống nhau nhưng các serotyp khác nhau không gây miễn dịch chéo cho nhau.
3. Thuốc thử và vật liệu thử
Chỉ sử dụng thuốc thử loại tinh khiết phân tích và sử dụng nước cất hoặc nước đã khử khoáng hoặc nước có độ tinh khiết tương đương không có Rnase, trừ khi có quy định khác.
– Carbonat/Bicarbonat (CaCo3/NaHCO3), dạng viên
– Thuốc thử, Tween 20
– Axit clohydric (HCl)
– Glyxerin [C3H5(OH)3]
– Dung dịch TE
– Dung dịch TAE 1X.
– Agaroza
– Etidi bromua (EtBr)
– Bộ kit ELISA phát hiện kháng nguyên lở mồm long móng (Pirbright-UK)
– Bộ kit LPB-ELISA phát hiện kháng thể lở mồm long móng (Pirbright-UK)
– Bộ kit FMD-3ABC ELISA phát hiện kháng thể lở mồm long móng do mắc bệnh tự nhiên
– Bộ kit chiết tách ARN
– Bộ kít nhân gen RT-PCR
– Môi trường tế bào MEM (Modified Eagles Medium)
– Tế bào dòng BHK-21 (Baby Hamster kidney) hoặc tế bào thận cừu sơ cấp
4. Thiết bị, dụng cụ
Sử dụng các thiết bị, dụng cụ của phòng thử nghiệm thông thường và cụ thể như sau:
– Tủ lạnh
– Tủ ấm 37 °C
– Máy lắc đĩa (orbital shaker)
– Máy lắc trộn (vortex mixer)
– Nồi đun cách thủy (water bath)
– Máy đọc ELISA với kính lọc 492 nm
– Máy rửa đĩa ELISA.
– Buồng cấy ATSH cấp II (BSC ll-Bio-safety cabinet)
– Máy ly tâm
– Máy PCR
– Máy Realtime PCR
– Bình nón, dung tích 100 ml, 200 ml, 500 ml và 1000 ml.
– Ống đong thủy tinh, dung tích 50 ml, 100 ml, 200 ml, 500 ml và 1000 ml.
– Cốc có mỏ các cỡ: 100 ml, 200 ml, 500 ml và 1000 ml
– Ống nghiệm
– Lọ nhỏ
– Máng trộn chất phản ứng (reagent trough)
– Pipet thủy tinh, dung tích 1 ml, 5 ml và 10 ml.
– Micropipet đơn kênh, dung tích từ 0,5 ml đến 10 ml, từ 5 ml đến 40 ml, từ 40 ml đến 200 ml, từ 200 ml đến 1000 ml.
– Micropipet đa kênh, dung tích từ 8 ml đến 12 ml, từ 5 ml đến 50 ml, từ 50 ml đến 300 ml.
– Đầu tip phù hợp với micropipet
– Bộ cối chày sứ
– Cát sạch để nghiền bệnh phẩm
– Khăn bông
– Dao, kéo, panh kẹp.
5. Lấy mẫu
Bệnh phẩm để phát hiện virus hoặc kháng nguyên là tổ chức biểu mô của mụn nước chưa vỡ hoặc mới vỡ và dịch mụn nước. Mẫu bệnh phẩm biểu mô tối thiểu là 2 g. Bệnh phẩm sau khi lấy được bảo quản trong dung dịch đệm PBS 0,04 M có Glyxerin, pH từ 7.2 đến 7.6 ở nhiệt độ -20 °C. Mẫu biểu mô và mụn nước để phát hiện kháng nguyên thì trong vòng 7 ngày kể từ khi phát hiện bệnh còn sau 7 ngày nên lấy mẫu huyết thanh để phát hiện kháng thể, máu được lấy vô trùng, lượng tối thiểu là 3 ml, để đông, chắt lấy huyết thanh. Bảo quản ở nhiệt độ từ 2 °C đến 8 °C. Nên lấy ít nhất là 5 mẫu.
Mẫu sau khi lấy được giữ trong điều kiện lạnh, bao gói cẩn thận để không làm lây lan bệnh rồi chuyển tới phòng xét nghiệm càng sớm càng tốt để có kết quả xét nghiệm chính xác.
6. Cách tiến hành
6.1. Chẩn đoán lâm sàng
6.1.1. Dịch tễ học
Bệnh lở mồm long móng gây thành dịch ở nhiều loài động vật móng gốc chẵn, chủ yếu ở trâu bò và lợn. Sự nhiễm khuẩn qua nhiều con đường nhưng chủ yếu là qua không khí.
Bệnh do nhiều typ và tiểu typ của Aphthovirus gây ra. Các typ huyết thanh có sự phân bố khác nhau trên thế giới. Typ huyết thanh O, A được nhận biết ở nhiều vùng khác nhau trên thế giới. Trái lại các typ huyết thanh SAT1, SAT2, SAT3 được giới hạn ở một số nước thuộc châu Phi. Typ huyết thanh Asia 1 được tìm thấy ở nhiều nước thuộc châu Á.
Trong các ổ dịch, động vật có thể mắc bệnh do một hoặc cùng một lúc nhiều typ. Bệnh có tính chất lây lan nhanh, mạnh, rộng đối với động vật mẫn cảm.
Bệnh có thể lây trực tiếp từ động vật mắc bệnh đến động vật mẫn cảm, hay lây gián tiếp qua sản phẩm động vật (thịt, sữa, tinh dịch, da..), dụng cụ chăn nuôi, vận chuyển gia súc…
6.1.2. Triệu chứng lâm sàng
Ở trâu bò và lợn hoặc các loài vật khác đều có chung đặc điểm là sốt đột ngột trong khoảng từ 2 ngày đến 3 ngày, viêm mụn nước rồi lở loét ở miệng, vú, vùng móng chân, nước bọt chảy nhiều như bọt bia. Niêm mạc miệng, môi, lợi, chân răng đỏ ửng, khô, nóng. Mụn nước bắt đầu mọc ở bên trong má, mép, chân răng, môi, lợi, và bề mặt lưỡi. Kích thước mụn bằng hạt gạo, hạt ngô hoặc to hơn. Mụn nước phồng lên, có màng bọc mỏng, bên trong chứa nước trong, sau đục dần. Sau 1 ngày đến 2 ngày, mụn nước bị vỡ, lớp niêm mạc tróc ra để lộ mặt dưới đỏ, chạm nhẹ vào dễ chảy máu. Mụn nước thường không có mủ. Nước bọt sùi ra đầy mõm miệng, chảy lòng thòng thành sợi dài.
Do có viêm mụn nước ở vùng vành móng, kẽ móng chân làm con vật khó chịu, tỏ ra đau đớn, bồn chồn, luôn nhấc chân lên. Dễ thấy nhất là hiện tượng què trong khoảng 1 tuần đến 2 tuần. Có trường hợp móng chân bị long hẳn ra, phổ biến nhất là ở lợn.
Ở con vật cái đang nuôi con, triệu chứng ở bầu vú, núm vú cũng tương tự như ở miệng và chân làm con vật giảm tiết sữa, sữa bị giảm phẩm chất. Con mẹ thường không cho con bú vì đau, làm con non thiếu sữa. Hơn nữa chính con non cũng bị viêm lở mồm như mẹ nên không bú được. Hậu quả có tới 50 % đến 80 % gia súc non bị chết. Con vật mang thai dễ bị sẩy thai.
Biến chứng: Viên cơ tim ở súc vật non và viêm ruột (bê non, lợn dưới 2 tháng).
6.1.3. Giải phẫu bệnh học
Mổ khám bệnh tích chủ yếu là từ miệng tới thực quản, dạ dày, ruột đều có mụn loét với từng mảng xuất huyết hoặc tụ máu. Bộ máy hô hấp cũng bị viêm. Có mụn nước ở mồm (niêm mạc môi, lợi, lưỡi và vòm miệng), mũi, kẽ móng, viền móng và núm vú. Mụn nước vỡ có thể thành vết loét, chảy máu.
Lưỡi trâu, bò thường bị bong tróc biểu mô 2/3 phía trước, móng bị tụt, mặt ngoài tim có những vệt hoại tử màu trắng xen kẽ trông giống như da hổ nên gọi là “tim vằn hổ”.
6.2. Chẩn đoán phòng thí nghiệm
6.2.1. Phát hiện kháng nguyên
6.2.1.1. Xử lý bệnh phẩm
Mẫu bệnh phẩm là biểu mô của mụn nước được nghiền trong cối chày sứ với dung dịch PBS 0,04 M tỷ lệ 1:10. Ly tâm huyễn dịch bệnh phẩm 2000 r/min trong 10 min. Hút lấy dịch nước trong ở phía trên rồi cho dung dịch kháng khuẩn vào ( 0,01 ml/ 1ml huyễn dịch, xem Phụ lục A) lắc đều trong 15 min đến 20 min rồi tiến hành làm phản ứng ELISA, RT-PCR (rRT-PCR) hoặc phân lập trên tế bào.
6.2.1.2. Phương pháp ELISA phát hiện kháng nguyên
6.2.1.2.1. Nguyên tắc
Phản ứng Sandwich ELISA gián tiếp có thể phát hiện nhiều typ kháng nguyên (O, A, C và Asia 1). Phản ứng được thực hiện trên đĩa đáy bằng, 96 lỗ (Nunc, Maxisorp).
6.2.1.2.2. Các bước tiến hành (xem Phụ lục B)
6.2.1.3. Phương pháp RT-PCR và rRT-PCR
6.2.1.3.1. Nguyên tắc
Phản ứng chuỗi polyme phiên mã ngược dùng để phát hiện ARN của virus lở mồm long móng. Hiện nay phản ứng RT-PCR có thể phát hiện và định typ của virus lở mồm long móng, còn phản ứng rRT- PCR chỉ cho phép phát hiện virus lở mồm long móng.
6.2.1.3.2. Các bước tiến hành (Xem Phụ lục C)
– Chiết tách ARN bằng kit theo hướng dẫn của nhà sản xuất
– Chạy RT-PCR hoặc Realtime RT-PCR
6.2.1.4. Phân lập virus trên môi trường tế bào
Dùng tế bào dòng BHK-21 hoặc tế bào thận cừu sơ cấp.
Nhiễm huyễn dịch bệnh phẩm 1 ml/ chai tế bào (T25).
Ủ ở nhiệt độ 37 °C trong 60 min, sau đó cho dung dịch MEM (Eagle’s) không có huyết thanh nuôi tiếp.
Hàng ngày kiểm tra bệnh tích tế bào-cytopathogen effect (CPE): Nếu tới 48 h có CPE xuất hiện thì thu hỗn dịch tế bào, ly tâm 2000 g/min trong 15 min. Lấy dịch nổi giám định virus. Nếu sau 48 h không có CPE thì thu hỗn dịch tế bào và cấy chuyển tiếp, sau 3 lần không có CPE thì mẫu được coi là âm tính (không có virus lở mồm long móng).
Giám định virus phân lập:
Sử dụng phương pháp ELISA phát hiện kháng nguyên.
Sử dụng phương pháp RT-PCR phát hiện ARN virus.
6.2.2. Phát hiện kháng thể
Phát hiện kháng thể lở mồm long móng dùng để chẩn đoán trong trường hợp gia súc mắc bệnh có triệu chứng của bệnh lở mồm long móng, chưa bao giờ tiêm phòng vắc xin lở mồm long móng.
6.2.2.1. Phương pháp ELISA FMD-3ABC, dùng để phát hiện kháng thể lở mồm long móng ở gia súc do nhiễm tự nhiên.
6.2.2.1.1. Nguyên tắc
Gia súc nhiễm bệnh lở mồm long móng sẽ sản sinh kháng thể kháng protein không cấu trúc (3ABC), trong khi gia súc khỏe mạnh, chưa bao giờ nhiễm bệnh được tiêm phòng vắc xin lở mồm long móng tinh khiết không có kháng thể này.
6.2.2.1.2. Các bước tiến hành: Theo quy trình của nhà sản xuất.
6.2.2.2. Phương pháp Liquid phase blocking ELISA:
6.2.2.2.1. Nguyên tắc
Sử dụng bộ kit ELISA phát hiện kháng thể lở mồm long móng ở gia súc. Dùng để định typ virus nếu gia súc chưa bao giờ tiêm phòng mà có kháng thể lở mồm long móng tự nhiên dương tính và có thể dùng để đánh giá hiệu giá kháng thể sau khi tiêm phòng vắc xin lở mồm long móng. Dựa trên nguyên tắc phản ứng Sandwich ELISA gián tiếp phát hiện và định typ huyết thanh của kháng thể lở mồm long móng. Phản ứng thực hiện trên đĩa đáy bằng, 96 lỗ (Nunc, Maxisorp).
6.2.2.2.2. Các bước tiến hành (xem Phụ lục D)
6.2.3. Chẩn đoán phân biệt với một số bệnh
– Bệnh viêm miệng có mụn nước (vesicular stomatitis)
– Bệnh mụn nước ở lợn (swine vesicular disease)
– Bệnh ngoại ban mụn nước (vesicular exanthema)
7. Kết luận
Gia súc được xác định mắc bệnh lở mồm long móng khi có các đặc điểm dịch tễ học, triệu chứng lâm sàng của bệnh lở mồm long móng và kết quả dương tính với một trong những phương pháp xét nghiệm sau:
– Phản ứng ELISA phát hiện kháng nguyên dương tính.
– Phản ứng RT-PCR phát hiện virus dương tính.
– Phản ứng ELISA phát hiện kháng thể dương tính ở gia súc chưa tiêm phòng.
– Phương pháp ELISA FMD-3ABC phát hiện kháng thể kháng virus lở mồm long móng do nhiễm tự nhiên dương tính.
– Phân lập được virus trên môi trường tế bào, và giám định virus lở mồm long móng dương tính.
Phụ lục A
(Quy định)
Các công thức pha chế dung dịch
A.1. Dung dịch bảo quản
– PBS 0,04 M:
| Na2HPO4.2H2O | 3,05 g |
| KH2PO4 | 0,39 g |
| Nước cất | 500 ml |
| Đỏ phenol 1 % | 1 ml |
– Kháng sinh:
| Penicilline | 1000 UI/ml |
| Mycostatine | 100 UI/ml |
| Neomycine | 100 UI/ml |
| Polymicine | 50 UI/ml |
Sau khi pha kiểm tra pH từ 7,2 đến 7,6 chỉnh pH với NaOH 1 N hoặc HC 1 N
Chú ý: Khi dùng pha dung dịch bảo quản với glyxerin tỷ lệ 1:1
A.2. Dung dịch đệm
Dung dịch đệm carbonat/bicarbonat dung dịch đệm 0,05 M, pH 9,6
| NaHCO3 |
2,93 g/l |
| Na2CO3 |
1,59 g/l |
A.3. Dung dịch PBS 0,002 M, pH 7,4
| Na2HPO4 |
4,84 g/l |
| KH2PO4 |
0,80 g/l |
| NaCl |
32,00 g/l |
| KCl |
0,80 g/l |
A.4. Dung dịch đệm A: PBS 0,01 M + 0,05 % Tween 20, pH từ 7,2 đến 7,6
| Na2HPO4 |
1,21 g/l |
| KH2PO4 |
0,20 g/l |
| NaCl |
8,00 g/l |
| KCl |
0,20 g/l |
A.5. Dung dịch đệm B: PBS 0,01 M + 0,05 % Tween 20 + 5 % sữa bột tách bơ, pH từ 7,2 đến 7,6
| Na2HPO4 | 1,21 g/l |
| KH2PO4 | 0,20 g/l |
| NaCl | 8,00 g/l |
| KCl | 0,20 g/l |
A.6. Dung dịch kháng khuẩn
Hòa tan kháng sinh bằng nước cất rồi lọc màng lọc cỡ lỗ 0,45 mm, bảo quản ở ngăn đá tủ lạnh.
| Penicilline | 1.000.000 UI |
| Mycostatine | 250.000 UI |
| Streptomycine | 200 mg |
| Kanamicine | 1.000.000 UI |
| Nước cất vô trùng | 10 ml |
A.7. Chuẩn bị mồi
– Mồi đông khô phải được ly tâm ngắn để chắc chắn rằng mồi được lắng xuống đáy ống trước khi mở và hoàn nguyên. Lần đầu tiên nên dùng đệm TE để hoàn nguyên mồi ở nồng độ 200 pmol/ml làm gốc.
– Mồi sử dụng ở nồng độ 20 pmol/ml: pha loãng mồi gốc bằng nước không có nuclease.
| Mồi gốc | 10 ml |
| Nước không chứa RNAse | 90 ml |
| Tổng lượng | 100 ml |
Phụ lục B
(Quy định)
Quy trình ELISA phát hiện kháng nguyên
B.1. Cách tiến hành
– Gắn đĩa (coating): Kháng huyết thanh thỏ kháng virus lở mồm long móng của các typ O, A, C và Asia 1 pha loãng 1:1000 với dung dịch coating dung dịch đệm (Phụ lục A), nhỏ 50 ml vào các giếng tương ứng. Đậy nắp, ủ và lắc ở nhiệt độ 37 °C/1 h hoặc ủ qua đêm ở 4 °C.
– Rửa đĩa 3 lần bằng dung dịch rửa PBS 0,002M.
– Nhỏ 50 ml kháng nguyên đối chứng dương tính mạnh (1:10) và yếu (1:100) pha loãng bằng dung dịch đệm A (Phụ lục A) và mẫu bệnh phẩm vào các giếng quy định (Phụ lục B), ủ và lắc ở nhiệt độ 37 °C/1 h.
– Rửa 3 lần bằng dung dịch rửa PBS 0,002M (Phụ lục A)
– Nhỏ kháng thể phát hiện: Mỗi giếng nhỏ 50 ml kháng huyết thanh chuột lang kháng virus lở mồm long móng vào các giếng tương ứng, mỗi serotyp được pha loãng (1:100) với dung dịch đệm B (xem Phụ lục A). Đậy nắp, ủ và lắc ở nhiệt độ 37 °C/1 h.
– Rửa 3 lần bằng dung dịch rửa PBS 0,002 M (Phụ lục A)
– Nhỏ chất gắn kết (1:200 pha với dung dịch đệm B): 50 ml/giếng.
Đậy nắp, ủ và lắc ở nhiệt độ 37 °C/40 min.
– Rửa 3 lần bằng dung dịch rửa PBS 0,002 M (Phụ lục A)
– Nhỏ cơ chất chromogen (dung dịch chromogen + 5 % cơ chất): 50 ml/giếng, để 20 min ở nhiệt độ phòng, chỗ tối.
– Dừng phản ứng: nhỏ dung dịch H2SO4 1,25 M với 50 ml/giếng.
B.2. Đọc kết quả
Đọc bằng máy đọc ELISA có kính lọc 492 nm. Nếu giá trị OD > 0,1 sau khi đã trừ đi giá trị trung bình của cột trắng thì phản ứng được coi là dương tính với serotyp đó.
Nếu OD = 0,1 thì cấy chuyển mẫu bệnh phẩm lên môi trường tế bào rồi kiểm tra lại.
Sơ đồ đĩa phản ứng ELISA phát hiện kháng nguyên
Phụ lục C
(Quy định)
Quy trình kỹ thuật RT- PCR phát hiện ARN virus lở mồm long móng
C.1. Chiết tách ARN
Theo hướng dẫn của nhà sản xuất.
C.2. Tiến hành phản ứng RT-PCR
C.2.1. Công thức
Áp dụng cho kit RT-PCR 1 bước của hãng Qiagen (nếu dùng kit khác có thể phải thay đổi công thức pha chế)
|
Nguyên liệu |
Thể tích (ml) |
| H2O |
12,0 |
| 5X Dung dịch đệm |
5,0 |
| dNTP |
1,0 |
| Hỗn hợp enzym |
1,0 |
| Mồi xuôi |
0,5 |
| Mồi ngược |
0,5 |
| Mẫu ARN |
5,0 |
| Tổng cộng |
25,0 |
|
FMDV- Uni |
Mồi |
Chiều |
Chuỗi (5’ – 3’) |
Kích thước (bp) |
|
1R |
Ngược |
CCA GTC CCC TTC TCA GAT C |
328 |
|
|
1F |
Xuôi |
GCC TGG TCT TTC CAG GTC |
C.2.2. Chu trình nhân gen
|
Bước |
Chu kỳ |
Thời gian |
Nhiệt đô |
|
Bước 1 |
1 chu kỳ |
45 min |
37 °C |
|
Bước 2 |
1 chu kỳ |
10 min |
94 °C |
|
Bước 3 |
1 chu kỳ |
5 min |
94 °C |
|
30 chu kỳ |
1 min |
94 °C |
|
|
1 min |
55 °C |
||
|
1 min |
72 °C |
||
|
Bước 4 |
1 chu kỳ |
8 min |
72 °C |
|
Bước 5 |
1 chu kỳ |
∞ |
4 °C |
C.2.3. Chạy điện di
– Chuẩn bị thạch Agaroza 2 % pha trong dung dịch TAE 1X hoặc TBE 1X có Etidi bromua (10 μg/μl).
– Đổ thạch vào khuôn điện di (có lược).
– Thạch khô, rút lược ra và cho mẫu vào các giếng (8 μl sản phẩm PCR + 2 μl dung dịch loading dung dịch đệm).
– Sử dụng Marker trọng lượng phân tử (thang 100 bp).
– Chú ý khi chạy PCR phải có mẫu đối chứng dương và đối chứng âm đi kèm (mẫu đối chứng âm có thể là nước cất sạch).
C.2.4. Đọc kết quả
– Mẫu dương tính: Xuất hiện vạch và có kích thước bằng kích thước giống mẫu đối chứng dương
– Mẫu âm tính: Không có vạch.
C.2.5. Đánh giá kết quả
Có virus Lở mồm long móng ở trong mẫu bệnh phẩm nếu kết quả PCR dương tính.
C.3. Phương pháp Realtime RT-PCR: sử dụng mồi và probe
C.3.1. Công thức
Áp dụng cho kit RT-PCR 1 bước của hãng Qiagen (nếu dùng kit khác có thể phải thay đổi công thức pha chế).
|
Nguyên liệu |
Thể tích (ml) |
| H2O |
10,5 |
| Dung dịch đệm 5X |
5,0 |
| MgCl2 (25 mM) |
1,2 |
| dNTP |
0,8 |
| Hỗn hợp enzym |
1,0 |
| Mồi xuôi (20 mM) |
0,5 |
| Mồi ngược (20 mM) |
0,5 |
| Probe (6 mM) |
0,5 |
| Mẫu ARN |
5,0 |
| Tổng cộng |
25,0 |
|
Mồi và probe |
Chuỗi (5’ – 3’)-FAM |
|
Mồi xuôi |
AGATGCAGGARGACATGTCAA |
|
Mồi ngược |
TTGTACCAGGGYTTGGCYT |
|
Probe |
AAACACGGACCCGACTTTAACCG |
C.3.2. Chu trình nhân gen
|
Bước |
Chu kỳ |
Thời gian |
Nhiệt độ |
| Bước phiên mã ngược |
1 chu kỳ |
15 min |
50 °C |
|
2 min |
95 °C |
||
| Bước biến tính |
40 chu kỳ |
10 s |
95 °C |
| Bắt cặp |
50 s |
60 °C |
C.3.3. Đọc kết quả
– Mẫu dương tính: Khi 35 ≥Ct≥20.
– Mẫu âm tính: Khi không có Ct.
– Mẫu nghi ngờ: Khi 40≥Ct≥35.
C.3.4. Đánh giá kết quả
Có virus lở mồm long móng ở trong mẫu bệnh phẩm nếu kết quả đồ thị Realtime RT- PCR dương tính. Với những mẫu nghi ngờ cần làm lại.
C.4. Định typ virus lở mồm long móng: sử dụng mồi typ O, A, Asia1 của Pirbright
C.4.1. Công thức
Áp dụng cho kit RT-PCR 1 bước của hãng Qiagen (nếu dùng kit khác có thể phải thay đổi công thức pha chế)
|
Nguyên liệu |
Thể tích (ml) |
| H2O |
12,0 |
| 5X Dung dịch đệm |
5,0 |
| dNTP |
1,0 |
| Hỗn hợp enzym |
1,0 |
| Mồi xuôi |
0,5 |
| Mồi ngược |
0,5 |
| Mẫu ARN |
5,0 |
| Tổng cộng |
25,0 |
C.4.2. Chu trình nhân gen
| Bước | Chu kỳ |
Thời gian |
Nhiệt độ |
| Bước 1 | 1 chu kỳ |
45 min |
37 °C |
| Bước 2 | 1 chu kỳ |
10 min |
94 °C |
| Bước 3 | 1 chu kỳ |
5 min |
94 °C |
| 20 chu kỳ |
1 min |
94 °C |
|
|
1 min |
58 °C |
||
|
2 min |
72 °C |
||
| Bước 4 | 1 chu kỳ |
8 min |
72 °C |
| Bước 5 | 1 chu kỳ |
∞ |
4 °C |
Quy trình nhân gen này áp dụng cho mồi typ O, A, Asia1 của Pirbright, đối với các cặp mồi khác quy trình có thể thay đổi cho phù hợp.
|
Typ Virus |
Cặp mồi |
Chiều |
Chuỗi (5’ – 3’) |
Kích thước (bp) |
|
FMDV O |
P33 |
Ngược |
AGC TTG TAC CAG GGT TTG GC |
402 |
|
P38 |
Xuôi |
GCT GCC TAC CTC CTT CAA |
||
|
FMDV A |
P33 |
Ngược |
AGC TTG TAC CAG GGT TTG GC |
732 |
|
P87 |
Xuôi |
GTC ATT GAC CTC ATG CAG ACC CAC |
||
|
FMDV C |
P33 |
Ngược |
AGC TTG TAC CAG GGT TTG GC |
596 |
|
P40 |
Xuôi |
GTT TCT GCA CTT GAC AAC ACA |
||
|
FMDV Asia 1 |
P33 |
Ngược |
AGC TTG TAC CAG GGT TTG GC |
292 |
|
P74 |
Xuôi |
GAC ACC ACT CAG GAC CGC CG |
C.4.3. Chạy điện di
– Chuẩn bị thạch Agaroza 2 % pha trong dung dịch TAE 1X hoặc TBE 1X có Etidi bromua (10 mg/ml).
– Đổ thạch vào khuôn điện di (có lược).
– Thạch khô, rút lược ra và cho mẫu vào các giếng (8ml sản phẩm PCR + ml dung dịch loading dung dịch đệm).
– Sử dụng Marker trọng lượng phân tử (thang 100 bp).
– Chú ý khi chạy PCR phải có mẫu đối chứng dương và đối chứng âm đi kèm (mẫu đối chứng âm có thể là nước cất sạch).
C.4.4. Đọc kết quả
– Mẫu dương tính: Xuất hiện vạch và có kích thước bằng kích thước giống mẫu đối chứng dương
– Mẫu âm tính: Không có vạch.
C.4.5. Đánh giá kết quả
Virus lở mồm long móng ở trong mẫu bệnh phẩm thuộc typ gì tùy thuộc kết quả chạy điện di dương tính ở loại mồi nào.
Phụ lục D
(Quy định)
Quy trình kỹ thuật ELISA phát hiện kháng thể của PIRBRIGHT
D.1. Cách tiến hành
Gắn đĩa (coating): Kháng huyết thanh thỏ kháng virus lở mồm long móng đã pha loãng 1:1000 với coating dung dịch đệm, nhỏ 50 ml/giếng. Đậy nắp, ủ và lắc ở nhiệt độ 37 °C/1 h hoặc ủ qua đêm ở 4 °C.
Chuẩn bị hỗn hợp kháng nguyên-huyết thanh (liquid phase blocking), nhỏ vào đĩa nhựa polypropylen 96 giếng đáy chữ U (Phụ lục A):
– Huyết thanh đối chứng và kiểm tra được pha loãng 1:16 với dung dịch đệm A, 50 ml/giếng.
– Kháng nguyên pha loãng theo tỷ lệ cho trước, 50 ml/giếng.
Hỗn hợp được ủ qua đêm ở 4 °C.
Rửa đĩa ELISA 3 lần bằng dung dịch rửa PBS 0,002 M (Phụ lục A)
Chuyển 50 ml hỗn hợp kháng nguyên-huyết thanh từ đĩa chữ U sang đĩa ELISA theo vị trí tương ứng (Phụ lục D). Đậy nắp, ủ và lắc ở nhiệt độ 37°C/1 h.
Rửa 3 lần bằng dung dịch rửa PBS 0,002M (Phụ lục A)
Nhỏ kháng thể phát hiện: Kháng huyết thanh chuột lang kháng virus lở mồm long móng pha loãng 1:100 với dung dịch đệm B, 50 ml/giếng. Đậy nắp, ủ và lắc ở nhiệt độ 37 °C/1 h.
Rửa 3 lần bằng dung dịch rửa PBS 0,002 M (Phụ lục A)
Nhỏ chất gắn kết: pha loãng 1:200 với dung dịch đệm B, 50 ml/giếng. Đậy nắp, ủ và lắc ở nhiệt độ 37 °C/40 min.
Rửa 3 lần bằng dung dịch rửa PBS 0,002 M (Phụ lục A)
Nhỏ cơ chất chromogen (dung dịch chromogen + 5 % cơ chất): 50 ml/giếng, để 20 min ở nhiệt độ phòng, chỗ tối.
Dừng phản ứng: nhỏ 50 ml/giếng bằng dung dịch H2SO4 1,25 M.
D.2. Đọc kết quả
Sử dụng máy đọc ELISA, kính lọc 492 nm. Sử dụng phần mềm edi để tính PI (phần trăm ức chế). Nếu PI ≥ 50 thì mẫu được coi là dương tính, trong huyết thanh có kháng thể lở mồm long móng.
Sơ đồ đĩa ELISA phát hiện kháng thể được trình bày ở Phụ lục D.
CHÚ Ý: Xác định hiệu giá kháng thể, mẫu huyết thanh được pha như sau:
– Huyết thanh kiểm tra: Pha loãng theo tỷ lệ 1:8.
– Nhỏ dung dịch dung dịch đệm A: 50 ml/giếng vào các lỗ của đĩa chữ U bắt đầu từ cột 3 cho đến cột thứ 12 của tất cả các hàng.
– Nhỏ huyết thanh kiểm tra đã pha loãng 1:8 vào các lỗ tương ứng 50 ml/giếng và pha loãng theo cơ số 2 từ hàng A đến hàng D và từ hàng E đến hàng H.
– Huyết thanh đối chứng: Chuẩn bị giống phát hiện kháng thể
– Nhỏ kháng nguyên đã pha loãng theo tỷ lệ cho trước 50 ml/giếng.
– Hỗn hợp kháng nguyên-huyết thanh được ủ qua đêm ở 4 °C.
– Các bước sau tiến hành theo trình tự giống phản ứng ELISA phát hiện kháng thể.
Sơ đồ đĩa phản ứng ELISA
Sơ đồ đĩa phản ứng ELISA phát hiện kháng thể
Sơ đồ đĩa phản ứng ELISA định lượng kháng thể
CHÚ THÍCH C++: huyết thanh ĐC dương tính mạnh
C+: huyết thanh ĐC dương tính yếu
C–: huyết thanh ĐC âm tính
Ca: đối chứng kháng nguyên
Công thức tính PI: PI = 100 –
THƯ MỤC TÀI LIỆU THAM KHẢO
[1] Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn – Cục Thú y, 2006. Tiêu chuẩn, quy trình ngành thú y, Quy trình chẩn đoán bệnh Dịch tả lợn /10 TCN 717-2006, trang 270-282
[2] O.I.E., 2009. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, Foot and Mouth Disease, chapter 2.1.5
[3] Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn – Viện Thú y, 2002. Cẩm nang chẩn đoán tiêu chuẩn về các bệnh gia súc ở Việt Nam, in lần thứ nhất, bệnh Lở mồm Long móng, trang 32-33.
| TIÊU CHUẨN QUỐC GIA TCVN 8400-1:2010 VỀ BỆNH ĐỘNG VẬT – QUY TRÌNH CHẨN ĐOÁN – PHẦN 1: BỆNH LỞ MỒM LONG MÓNG | |||
| Số, ký hiệu văn bản | TCVN8400-1:2010 | Ngày hiệu lực | 28/10/2010 |
| Loại văn bản | Tiêu chuẩn Việt Nam | Ngày đăng công báo | |
| Lĩnh vực |
Nông nghiệp - Nông thôn |
Ngày ban hành | 28/10/2010 |
| Cơ quan ban hành |
Bộ khoa học và công nghê |
Tình trạng | Hết hiệu lực |
Các văn bản liên kết
| Văn bản được hướng dẫn | Văn bản hướng dẫn | ||
| Văn bản được hợp nhất | Văn bản hợp nhất | ||
| Văn bản bị sửa đổi, bổ sung | Văn bản sửa đổi, bổ sung | ||
| Văn bản bị đính chính | Văn bản đính chính | ||
| Văn bản bị thay thế | Văn bản thay thế | ||
| Văn bản được dẫn chiếu | Văn bản căn cứ |
